{"id":20739,"date":"2021-03-23T15:26:09","date_gmt":"2021-03-23T15:26:09","guid":{"rendered":"http:\/\/prrscontrolidiomas.advertis.es\/3-metodos-alternativos-de-muestreo-y-conservacion\/"},"modified":"2021-03-26T11:28:23","modified_gmt":"2021-03-26T11:28:23","slug":"metodos-alternativos-de-muestreo-y-conservacion","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/diagnostico-y-monitorizacion\/metodos-alternativos-de-muestreo-y-conservacion\/","title":{"rendered":"<span>3<\/span> M\u00e9todos alternativos de muestreo y conservaci\u00f3n"},"content":{"rendered":"<div class=\"wpb-content-wrapper\"><p>[vc_row][vc_column width=\u00bb1\/1&#8243;][vc_column_text]<\/p>\n<h2>Fluidos orales<\/h2>\n<p>En algunos pa\u00edses, el fluido oral se ha convertido en una muestra muy utilizada para detectar el\u00a0genoma del virus del PRRS por RT-PCR y los anticuerpos por ELISA.<\/p>\n<p>Hay ensayos comerciales\u00a0y home-made para ambas t\u00e9cnicas. No obstante, es importante destacar que, debido a las\u00a0caracter\u00edsticas f\u00edsicas del fluido oral, los ensayos de RT-PCR y ELISA utilizados para el an\u00e1lisis\u00a0de suero no pueden utilizarse directamente, <strong>sino que deben adaptarse<\/strong>.[\/vc_column_text][vc_column_text]En comparaci\u00f3n con la extracci\u00f3n de sangre, las principales ventajas del uso de fluido oral en\u00a0animales son:<\/p>\n<ul>\n<li>El comportamiento natural de los cerdos facilita el muestreo.<\/li>\n<li>No es invasivo. Gran reducci\u00f3n del\u00a0estr\u00e9s.<\/li>\n<li>Mayor seguridad para los operarios.<\/li>\n<li>Reducci\u00f3n en mano de obra\/tiempo.<\/li>\n<li>Posibilidad de evaluar un gran n\u00famero\u00a0de individuos en muestras agregadas\u00a0(\u00fatiles para monitorizar).<\/li>\n<\/ul>\n<p>[\/vc_column_text][vc_column_text]<strong>Con respecto a la RT-PCR<\/strong>, el suero y el fluido oral podr\u00edan considerarse equivalentes durante\u00a0el per\u00edodo de viremia. Durante las dos primeras semanas, la cantidad de virus en suero es\u00a0igual o superior, mientras que a partir de las tres o cuatro semanas es mayor en el fluido oral.[\/vc_column_text][vc_column_text el_class=\u00bbdestacado\u00bb]<\/p>\n<blockquote><p><strong>Dado que el per\u00edodo de excreci\u00f3n del virus del PRRS suele ser\u00a0m\u00e1s prolongado que la viremia, se pueden obtener resultados\u00a0positivos a partir de fluido oral durante d\u00edas o incluso semanas\u00a0despu\u00e9s del final de la viremia<\/strong>.<\/p><\/blockquote>\n<p>[\/vc_column_text][vc_column_text]Por tanto, <strong>los cerdos podr\u00edan mostrar resultados RT-PCR negativos para el suero y positivos\u00a0para el fluido oral<\/strong>. Durante este per\u00edodo, la detecci\u00f3n del virus en el fluido oral suele ser\u00a0intermitente.<\/p>\n<p>Otro punto importante a tener en cuenta es que el per\u00edodo de excreci\u00f3n en\u00a0cerdos infectados previamente vacunados es menor y mucho m\u00e1s intermitente. Obviamente,\u00a0este hecho tiene implicaciones directas en el uso de fluidos orales en una granja end\u00e9mica\u00a0donde se haya vacunado los animales a muestrear.[\/vc_column_text][vc_column_text]<strong>Los ELISAs para sueros<\/strong> podr\u00edan considerarse espec\u00edficos con un grado variable de sensibilidad.\u00a0En el caso de los fluidos orales, parece que los ELISAs s\u00ed podr\u00edan tener un problema de\u00a0especificidad, detect\u00e1ndose un 5-7% de falsos positivos.[\/vc_column_text]<div class=\"single_image wpb_content_element align-left  animate image_box_rounded image_zoom \" data-animation=\"fade-in\" data-delay=\"300\"><a href=\"https:\/\/prrscontrol.com\/wp-content\/uploads\/2021\/03\/Evolucion-de-la-infeccion-y-deteccion-del-virus-del-PRRS-2.jpg\" class=\"prettyPhoto\" rel=\"prettyPhoto[image]\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" width=\"1400\" height=\"1062\" src=\"https:\/\/prrscontrol.com\/wp-content\/uploads\/2021\/03\/Evolucion-de-la-infeccion-y-deteccion-del-virus-del-PRRS-2.jpg\" class=\"attachment-full\" alt=\"\" title=\"Evolucion-de-la-infeccion-y-deteccion-del-virus-del-PRRS-2\" srcset=\"https:\/\/prrscontrol.com\/wp-content\/uploads\/2021\/03\/Evolucion-de-la-infeccion-y-deteccion-del-virus-del-PRRS-2.jpg 1400w, https:\/\/prrscontrol.com\/wp-content\/uploads\/2021\/03\/Evolucion-de-la-infeccion-y-deteccion-del-virus-del-PRRS-2-300x228.jpg 300w, https:\/\/prrscontrol.com\/wp-content\/uploads\/2021\/03\/Evolucion-de-la-infeccion-y-deteccion-del-virus-del-PRRS-2-768x583.jpg 768w, https:\/\/prrscontrol.com\/wp-content\/uploads\/2021\/03\/Evolucion-de-la-infeccion-y-deteccion-del-virus-del-PRRS-2-1024x777.jpg 1024w, https:\/\/prrscontrol.com\/wp-content\/uploads\/2021\/03\/Evolucion-de-la-infeccion-y-deteccion-del-virus-del-PRRS-2-750x569.jpg 750w, https:\/\/prrscontrol.com\/wp-content\/uploads\/2021\/03\/Evolucion-de-la-infeccion-y-deteccion-del-virus-del-PRRS-2-1140x865.jpg 1140w\" sizes=\"auto, (max-width: 1400px) 100vw, 1400px\" \/><\/a><\/div>[vc_column_text][\/vc_column_text][vc_column_text]<strong>Las condiciones durante la recolecci\u00f3n, env\u00edo, almacenamiento,<\/strong> etc. del fluido oral pueden\u00a0influir en la eficiencia del diagn\u00f3stico laboratorial:<\/p>\n<ul>\n<li>N\u00famero de cuerdas (distribuci\u00f3n, tama\u00f1o y densidad de los corrales).<\/li>\n<li>Material de las cuerdas. Se recomienda algod\u00f3n sin tratar.<\/li>\n<li>Los animales enfermos interact\u00faan menos, o incluso no interact\u00faan con la cuerda.<\/li>\n<li>Edad de los animales. Dif\u00edcil muestrear animales j\u00f3venes (3-5 semanas de edad), ya que interact\u00faan poco con la cuerda.<\/li>\n<li>Contaminaci\u00f3n por restos de pienso o heces.<\/li>\n<li>Condiciones de almacenamiento y env\u00edo. Es importante tener en cuenta que el ARN se degrada f\u00e1cilmente en los fluidos biol\u00f3gicos. Por lo tanto, las condiciones de\u00a0env\u00edo y almacenamiento son cr\u00edticas.<\/li>\n<li>M\u00e9todos de extracci\u00f3n del ARN.<\/li>\n<\/ul>\n<p>[\/vc_column_text][vc_column_text]<\/p>\n<h2>Cord\u00f3n umbilical<\/h2>\n<p>Cuando es necesario muestrear lechones reci\u00e9n nacidos, por ejemplo para determinar si existe\u00a0transmisi\u00f3n vertical, aparecen varios problemas: obtener fluido oral es muy <strong>complicado<\/strong>, y\u00a0respecto a la muestra de sangre esta es a menudo insuficiente o de <strong>mala calidad<\/strong> (coagulada).<\/p>\n<p>Adem\u00e1s, tomar sangre de animales peque\u00f1os es una <strong>tarea que requiere mucho tiempo<\/strong> y en\u00a0algunos casos se provoca la muerte del lech\u00f3n. Una alternativa en el muestreo de lechones\u00a0reci\u00e9n nacidos es recolectar el cord\u00f3n umbilical fresco.[\/vc_column_text][vc_column_text]Ventajas del cord\u00f3n umbilical para determinar la transmisi\u00f3n vertical:<\/p>\n<ul>\n<li>Muy f\u00e1cil de recoger. Puede ser realizado directamente por los trabajadores de la granja.\u00a0El cord\u00f3n umbilical debe ligarse y cortarse (se recomiendan porciones de \u2265 5 cm).<\/li>\n<li>Se puede congelar.<\/li>\n<li>El muestreo no consume mucho tiempo.<\/li>\n<li>La sensibilidad es tan alta como el sangrado.<\/li>\n<\/ul>\n<p>Como puede existir contaminaci\u00f3n cruzada, el cord\u00f3n umbilical se debe usar para determinar\u00a0el estado de la camada m\u00e1s que determinar la prevalencia del individuo.[\/vc_column_text][vc_column_text]<\/p>\n<h2>Sangre seca en papel de filtro (Absorbente)<\/h2>\n<p>A menudo, las condiciones de almacenamiento de las muestras en el campo no son \u00f3ptimas,\u00a0especialmente cuando se quieren analizar pat\u00f3genos ARN. Para prevenir la degradaci\u00f3n del\u00a0ARN, las muestras deben <strong>refrigerarse o congelarse<\/strong>.[\/vc_column_text][vc_column_text]El papel absorbente usado para almacenar sangre seca son filtros tratados que contienen\u00a0sustancias qu\u00edmicas que lisan las c\u00e9lulas, desnaturalizan las prote\u00ednas y protegen el ADN y\u00a0el ARN de las nucleasas, la oxidaci\u00f3n y el da\u00f1o de la luz UV.<\/p>\n<p>Se pueden usar para recolectar,\u00a0transportar y almacenar hasta 125 \u03bcL de sangre, fluido oral o cualquier otro fluido de inter\u00e9s\u00a0a temperatura ambiente.<\/p>\n<p>Por lo tanto, una de las principales ventajas de este m\u00e9todo es\u00a0que las muestras pueden <strong>enviarse al laboratorio por correo postal ordinario<\/strong>. Las muestras\u00a0pueden almacenarse durante largos per\u00edodos, de meses a a\u00f1os, ya que los \u00e1cidos nucleicos\u00a0se inmovilizan y se conservan en las fibras de la matriz.[\/vc_column_text][vc_column_text]Si comparamos la sensibilidad y la especificidad de la RT-PCR a tiempo real para la detecci\u00f3n\u00a0del virus del PRRS, directamente en muestras frescas o en muestras incorporadas en papel\u00a0absorbente, existen problemas en la detecci\u00f3n del virus en fluido oral incorporado en el papel.<\/p>\n<p>Respecto a la sangre incorporada al papel, la sensibilidad tambi\u00e9n podr\u00eda debido a la\u00a0poca cantidad de muestra recolectada, y especialmente en aquellas muestras con poca\u00a0cantidad de virus.<\/p>\n<p>Por lo tanto, las muestras frescas con valores Ct cercanos al corte (alto Ct,\u00a0es decir, poca cantidad de virus) podr\u00edan resultar negativas cuando se transfieren al papel\u00a0absorbente. En definitiva, parece que el m\u00e9todo podr\u00eda perder <strong>sensibilidad en los animales\u00a0infectados que ya no est\u00e1n cursando la forma m\u00e1s aguda<\/strong>.[\/vc_column_text][vc_column_text el_class=\u00bbaviso\u00bb]<\/p>\n<hr \/>\n<p style=\"text-align: center;\">\u00a9 Laboratorios Hipra, S.A. 2026. Reservados todos los derechos.<br \/>\nNinguna parte de este sitio web o cualquiera de sus contenidos puede ser reproducida, copiada, modificada o adaptada, sin el consentimiento previo por escrito de HIPRA.<\/p>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][\/vc_row][vc_row top_padding=\u00bb30&#8243; row_id=\u00bbreferencias\u00bb][vc_column width=\u00bb1\/1&#8243;]<div class=\"toggle\"><div class=\"toggle-title \"><i class='fa fal fa-book'><\/i>Referencias<\/div><div class=\"toggle-inner\"><p>\n<ul>\n<li>Bautista EM, Meulenberg JJ, Choi CS, Molitor TW. Structural polypeptides of the American (VR-2332) strain of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Arch Virol. 1996:1357-65.<\/li>\n<li>Benfield DA, Nelson E, Collins JE, Harris L, Hennings JC, Shaw DP, Goyal SM, McCullough S, Morrison RB, Joo HS, Gorcyca D, Chladek D. Characterization of swine infertility and respiratory syndrome (SIRS) virus (isolate ATCC VR-2332). J Vet Diagn Invest. 1992. 4, 127-133.<\/li>\n<li>Benfield D, Nelson J, Rossow K, Nelson C, Steffen M, Rowland R. Diagnosis of persistent or prolonged porcine reproductive and respiratory syndrome virus infections Vet Res. 2000, 31:71.<\/li>\n<li>Brockmeier SL, Halbur PG, Thacker EL. Porcine respiratory disease complex. In KA Brogden, JM Guthmiller, eds, Polymicrobial Diseases. Washington, DC: ASM Press. 2002, 231-58.<\/li>\n<li>Calzada-Nova G, Schnitzlein W, Husmann R, Zuckermann FA. Characterization of the cytokine and maturation responses of pure populations of porcine plasmacytoid dendritic cells to porcine viruses and toll-like receptor agonists. Vet Immunol Immunopathol. 2010, 135:20-33.<\/li>\n<li><a href=\"https:\/\/xpv.uab.cat\/pubmed\/,DanaInfo=.awxyCrhhpHwvxL0wwPx6C,SSL+?term=Chen%20WY%5BAuthor%5D&amp;cauthor=true&amp;cauthor_uid=29070690\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Chen WY<\/a>,\u00a0<a href=\"https:\/\/xpv.uab.cat\/pubmed\/,DanaInfo=.awxyCrhhpHwvxL0wwPx6C,SSL+?term=Schniztlein%20WM%5BAuthor%5D&amp;cauthor=true&amp;cauthor_uid=29070690\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Schniztlein WM<\/a>,\u00a0<a href=\"https:\/\/xpv.uab.cat\/pubmed\/,DanaInfo=.awxyCrhhpHwvxL0wwPx6C,SSL+?term=Calzada-Nova%20G%5BAuthor%5D&amp;cauthor=true&amp;cauthor_uid=29070690\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Calzada-Nova G<\/a>,\u00a0<a href=\"https:\/\/xpv.uab.cat\/pubmed\/,DanaInfo=.awxyCrhhpHwvxL0wwPx6C,SSL+?term=Zuckermann%20FA%5BAuthor%5D&amp;cauthor=true&amp;cauthor_uid=29070690\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">Zuckermann FA<\/a>. Genotype 2 strains of\u00a0porcine reproductive and respiratory syndrome\u00a0virus\u00a0dysregulate alveolar macrophage cytokine production via the unfolded protein response. <a href=\"https:\/\/xpv.uab.cat\/pubmed\/,DanaInfo=.awxyCrhhpHwvxL0wwPx6C,SSL+29070690\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\">J Virol.<\/a>2017, pii: JVI.01251-17.<\/li>\n<li>Christopher-Hennings J, Nelson EA, Hines RJ, Nelson JK, Swenson SL, Zimmerman JJ, Chase CL, Yaeger MJ, Benfield DA. Persistence of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in serum and semen of adult boars. J Vet Diagn Invest. 1995, 7:456-64.<\/li>\n<li>Cortey M, D\u00edaz I, Mart\u00edn-Valls GE, Mateu E. Next-generation sequencing as a tool for the study of Porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) macro- and micro- molecular epidemiology. Vet Microbiol. 2017. doi: 10.1016\/j.vetmic.2017.02.002.<\/li>\n<li>Darwich L, D\u00edaz I, Mateu E. Certainties, doubts and hypotheses in porcine reproductive and respiratory syndrome virus immunobiology. Virus Res. 2010, 154:123-32.<\/li>\n<li>D\u00edaz I, Darwich L, Pappaterra G, Pujols J, Mateu E. Different European-type vaccines against porcine reproductive and respiratory syndrome virus have different immunological properties and confer different protection to pigs. Virology. 2006, 351:249-59.<\/li>\n<li>D\u00edaz I, Gimeno M, Darwich L, Navarro N, Kuzemtseva L, L\u00f3pez S, Galindo I, Segal\u00e9s J, Mart\u00edn M, Pujols J, Mateu E. Characterization of homologous and heterologous adaptive immune responses in porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection. Vet Res. 2012, 19:43:30.<\/li>\n<li>Garc\u00eda-Nicol\u00e1s O, Quereda JJ, G\u00f3mez-Laguna J, Salguero FJ, Carrasco L, Ramis G, Pallar\u00e9s FJ. Cytokines transcript levels in lung and lymphoid organs during genotype 1 Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus (PRRSV) infection. Vet Immunol Immunopathol. 2014, 160:26-40.<\/li>\n<li>Gimeno M, Darwich L, Diaz I, de la Torre E, Pujols J, Mart\u00edn M, Inumaru S, Cano E, Domingo M, Montoya M, Mateu E. Cytokine profiles and phenotype regulation of antigen presenting cells by genotype-I porcine reproductive and respiratory syndrome virus isolates. Vet Res. 2011, 42:9.<\/li>\n<li>G\u00f3mez-Laguna J, Salguero FJ, Pallar\u00e9s FJ, Carrasco L. Immunopathogenesis of porcine reproductive and respiratory syndrome in the respiratory tract of pigs. Vet J. 2013, 195:148-55.<\/li>\n<li>Haynes JS, Halbur PG, Sirinarumitr T, Paul PS, Meng XJ, Huffman EL. Temporal and morphologic characterization of the distribution of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) by in situ hybridization in pigs infected with isolates of PRRSV that differ in virulence. Vet Pathol. 1997, 34:39-43.<\/li>\n<li>Hill H. Overview and history of Mystery Swine Disease (swine infertility\/respiratory syndrome). Proceedings of the Mystery Swine Disease Committee Meeting, Livestock Conversation Institute, Denver, CO. 1990, 29\u201331.<\/li>\n<li>Holtkamp DJ, Polson DD, Torremorrell M. Terminology for classifying swine herds by porcine reproductive and respiratory status.\u00a0J Swine Health and Prod<em>.<\/em> 2011, 19:44-56.<\/li>\n<li>Horter DC, Pogranichniy RM, Chang CC, Evans RB, Yoon KJ, Zimmerman JJ. Characterization of the carrier state in porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection. Vet Microbiol. 2002, 86:213-28.<\/li>\n<li>Loula T. Mystery pig disease. Agri-practice. 1991, 12:23\u201334.<\/li>\n<li>Lunney JK, Benfield DA, Rowland RR. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus: an update on an emerging and re-emerging viral disease of swine. Virus Res. 2010, 154:1-6.<\/li>\n<li>Mateu E, Tello M, Coll A, Casal J, Mart\u00edn M. Comparison of three ELISAs for the diagnosis of porcine reproductive and respiratory syndrome. Vet Rec. 2006, 159:717-8.<\/li>\n<li>Mateu E, Diaz I. The challenge of PRRS immunology. Vet J. 2008, 177:345-51.<\/li>\n<li>Meier WA, Galeota J, Osorio FA, Husmann RJ, Schnitzlein WM, Zuckermann FA. Gradual development of the interferon-gamma response of swine to porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection or vaccination. Virology. 2003, 309:18-31.<\/li>\n<li>Nelson EA, Christopher-Hennings J, Benfield DA. Serum immune responses to the proteins of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus. J Vet Diagn Invest. 1994, 6:410-5.<\/li>\n<li>Appendices IV and V of the REPORT OF THE OIE AD HOC GROUP ON PORCINE REPRODUCTIVE RESPIRATORY SYNDROME Paris, 9 &#8211; 11 June 2008 http:\/\/www.oie.int\/fileadmin\/Home\/eng\/Our_scientific_expertise\/docs\/pdf\/PRRS_guide_web_bulletin.pdf.<\/li>\n<li>Rodr\u00edguez-G\u00f3mez IM, G\u00f3mez-Laguna J, Carrasco L. Impact of PRRSV on activation and viability of antigen presenting cells. World J Virol. 2013, 2:146-51.<\/li>\n<li>Rovira A, Cano JP, Mu\u00f1oz-Zanzi C. Feasibility of pooled-sample testing for the detection of porcine reproductive and respiratory syndrome virus antibodies on serum samples by ELISA. Vet Microbiol. 2008, 130:60-8.<\/li>\n<li>Rovira A, Clement T, Christopher-Hennings J, Thompson B, Engle M, Reicks D, Mu\u00f1oz-Zanzi C. Evaluation of the sensitivity of reverse-transcription polymerase chain reaction to detect porcine reproductive and respiratory syndrome virus on individual and pooled samples from boars. J Vet Diagn Invest. 2007, 19:502-9.<\/li>\n<li>Rovira A, Reicks D, Mu\u00f1oz-Zanzi C. Evaluation of surveillance protocols for detecting porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection in boar studs by simulation modeling. J Vet Diagn Invest. 2007, 19:492-501.<\/li>\n<li>Salguero FJ, Frossard JP, Rebel JM, Stadejek T, Morgan SB, Graham SP, Steinbach F. Host-pathogen interactions during porcine reproductive and respiratory syndrome virus 1 infection of piglets. Virus Res. 2015, 202:135-43.<\/li>\n<li>Segal\u00e9s J, Domingo M, Balasch M, Solano GI, Pijoan C. Ultrastructural study of porcine alveolar macrophages infected in vitro with porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus, with and without Haemophilus parasuis. J Comp Pathol. 1998, 118:231-43.<\/li>\n<li>Sur JH, Cooper VL, Galeota JA, Hesse RA, Doster AR, Osorio FA. In vivo detection of porcine reproductive and respiratory syndrome virus RNA by in situ hybridization at different times postinfection. J Clin Microbiol. 1996, 34:2280-6.<\/li>\n<li>Terpstra C, Wensvoorst G, Pol JMA. Experimental reproduction of porcine epidemic abortion and respiratory syndrome (mystery swine disease) by infection with Lelystad virus: Koch&#8217;s postulates fulfilled. Vet Q. 1991, 13:131\u201336.<\/li>\n<li>Tian K, Yu X, Zhao T, Feng Y, Cao Z, Wang C, Hu Y, Chen X, Hu D, Tian X, Liu D, Zhang S, Deng X, Ding Y, Yang L, Zhang Y, Xiao H, Qiao M, Wang B, Hou L, Wang X, Yang X, Kang L, Sun M, Jin P, Wang S, Kitamura Y, Yan J, Gao GF. Emergence of fatal PRRSV variants: unparalleled outbreaks of atypical PRRS in China and molecular dissection of the unique hallmark. PLoS One. 200, 2:e526.<\/li>\n<li>Tong GZ, Zhou YJ, Hao XF, Tian ZJ, An TQ, Qiu HJ. Highly pathogenic porcine reproductive and respiratory syndrome, China. Emerg Infect Dis. 2007, 13:1434-6.<br \/>\nVan Alstine WG, Popielarczyk M, Albregts SR. Effect of formalin fixation on the immunohistochemical detection of PRRS virus antigen in experimentally and naturally infected pigs. J Vet Diagn Invest. 2002, 14:504-7.<\/li>\n<li>V\u00e9zina SA, Loemba H, Fournier M, Dea S, Archambault D. Antibody production and blastogenic response in pigs experimentally infected with porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Can J Vet Res. 1996, 60:94-9.<\/li>\n<li>Wensvoort G, Terpstra C, Pol JMA, Lask EA, Bloemraad M, de Kluyver EP, Kragten C, van Butten L, den Besten A, Wagenaar F, Broekhuijsen JM, Moonen PJM, Zetstra T, de Boer EA, Tibben AhJ, de Jong MF, van\u2019r Veld P, Groenland GJR, van Gennep JA, Voets MTh, Verheijden JHM, Braamkamp J. Mystery swine disease in the Netherlands: the isolation of Lelystad virus. Vet Q. 1991, 13:121\u201330.<\/li>\n<li>Wills RW, Doster AR, Galeota JA, Sur JH, Osorio FA. Duration of infection and proportion of pigs persistently infected with porcine reproductive and respiratory syndrome virus. J Clin Microbiol. 2003, 41:58-62.<\/li>\n<li>Zimmerman JJ, Benfield DA, Dee SA, Murtaugh MP, Stadejek T, Stevenson GW, Torremorell M. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus (porcine arterivirus). In: 10th ed. Diseases of swine, Ed. Wiley-Blackwell. 2012, 31:463-86.<\/li>\n<\/ul>\n<\/p><\/div><\/div>[\/vc_column][\/vc_row]<\/p>\n<div style=\"text-align:center\" class=\"yasr-auto-insert-visitor\"><\/div><\/div>","protected":false},"excerpt":{"rendered":"<p>[vc_row][vc_column width=\u00bb1\/1&#8243;][vc_column_text] Fluidos orales En algunos pa\u00edses, el fluido oral se ha convertido en una muestra muy utilizada para detectar el\u00a0genoma del virus del PRRS por RT-PCR y los anticuerpos por ELISA. Hay ensayos comerciales\u00a0y home-made para ambas t\u00e9cnicas. No obstante, es importante destacar que, debido a las\u00a0caracter\u00edsticas f\u00edsicas del fluido oral, los ensayos de RT-PCR y ELISA utilizados para el an\u00e1lisis\u00a0de suero no pueden utilizarse directamente, sino que deben adaptarse.[\/vc_column_text][vc_column_text]En comparaci\u00f3n con la extracci\u00f3n de sangre, las principales ventajas del uso de fluido oral en\u00a0animales son: El comportamiento natural de los cerdos facilita el muestreo. No es invasivo. Gran reducci\u00f3n del\u00a0estr\u00e9s. Mayor seguridad para los operarios. Reducci\u00f3n en mano de obra\/tiempo. Posibilidad de evaluar un gran n\u00famero\u00a0de individuos en muestras agregadas\u00a0(\u00fatiles para monitorizar). [\/vc_column_text][vc_column_text]Con respecto a la RT-PCR, el suero y el fluido oral podr\u00edan considerarse equivalentes durante\u00a0el per\u00edodo de viremia. Durante las dos primeras semanas, la cantidad de virus en suero es\u00a0igual o superior, mientras que a partir de las tres o cuatro semanas es mayor en el fluido oral.[\/vc_column_text][vc_column_text el_class=\u00bbdestacado\u00bb] Dado que el per\u00edodo de excreci\u00f3n del virus del PRRS suele ser\u00a0m\u00e1s prolongado que la viremia, se pueden obtener resultados\u00a0positivos a partir de fluido oral durante d\u00edas [&hellip;]<\/p>\n","protected":false},"author":19,"featured_media":17056,"parent":20772,"menu_order":3,"comment_status":"closed","ping_status":"closed","template":"","meta":{"_acf_changed":false,"_cbd_carousel_blocks":"[]","yasr_overall_rating":0,"yasr_post_is_review":"","yasr_auto_insert_disabled":"","yasr_review_type":"Product","footnotes":""},"categories":[],"tags":[],"class_list":["post-20739","page","type-page","status-publish","has-post-thumbnail","hentry"],"acf":[],"yasr_visitor_votes":{"number_of_votes":0,"sum_votes":0,"stars_attributes":{"read_only":false,"span_bottom":false}},"_links":{"self":[{"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/20739","targetHints":{"allow":["GET"]}}],"collection":[{"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/pages"}],"about":[{"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/types\/page"}],"author":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/users\/19"}],"replies":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/comments?post=20739"}],"version-history":[{"count":2,"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/20739\/revisions"}],"predecessor-version":[{"id":20916,"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/20739\/revisions\/20916"}],"up":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/20772"}],"wp:featuredmedia":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/media\/17056"}],"wp:attachment":[{"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/media?parent=20739"}],"wp:term":[{"taxonomy":"category","embeddable":true,"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/categories?post=20739"},{"taxonomy":"post_tag","embeddable":true,"href":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/wp-json\/wp\/v2\/tags?post=20739"}],"curies":[{"name":"wp","href":"https:\/\/api.w.org\/{rel}","templated":true}]}}