{"id":20770,"date":"2021-03-23T16:28:17","date_gmt":"2021-03-23T16:28:17","guid":{"rendered":"http:\/\/prrscontrolidiomas.advertis.es\/9-monitorizacion\/"},"modified":"2021-03-24T19:18:15","modified_gmt":"2021-03-24T19:18:15","slug":"monitorizacion","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/prrscontrol.com\/es\/diagnostico-y-monitorizacion\/monitorizacion\/","title":{"rendered":"<span>9<\/span> Monitorizaci\u00f3n"},"content":{"rendered":"<div class=\"wpb-content-wrapper\"><p>[vc_row][vc_column width=\u00bb1\/1&#8243;][vc_column_text el_class=\u00bbdestacado\u00bb]<\/p>\n<blockquote><p><strong>El manejo, la bioseguridad, la monitorizaci\u00f3n y la vacunaci\u00f3n son los\u00a0pilares sobre los cuales debe sustentarse un plan de control de PRRS.<\/strong><\/p><\/blockquote>\n<p>[\/vc_column_text][vc_column_text]La monitorizaci\u00f3n, basada en la detecci\u00f3n del virus por RT-PCR y los anticuerpos por ELISA, es\u00a0esencial para:<\/p>\n<ul>\n<li>Detectar problemas tempranos asociados con el PRRS.<\/li>\n<li>Clasificar la granja respecto al virus del PRRS.<\/li>\n<li>Verificar que se est\u00e1 implementando un programa de control.<\/li>\n<li>Evaluar el \u00e9xito de un programa de control<\/li>\n<\/ul>\n<p>[\/vc_column_text][vc_column_text el_class=\u00bbdestacado\u00bb]<\/p>\n<blockquote><p><strong>El primer paso para dise\u00f1ar un programa que tenga como\u00a0objeto controlar el virus del PRRS debe ser la evaluaci\u00f3n\u00a0del estado real de la granja. Los an\u00e1lisis de laboratorio son\u00a0esenciales para definir dicho estado.<\/strong><\/p><\/blockquote>\n<p>[\/vc_column_text][vc_column_text]Existen diferentes sistemas para clasificar las granjas seg\u00fan su estado de PRRS. De todas\u00a0formas, todos ellos comparten al menos tres categor\u00edas claras:<\/p>\n<ul>\n<li><strong>NEGATIVA<\/strong>: El estado negativo corresponde a un resultado negativo consistente\u00a0confirmado por ELISA.<br \/>\n<strong>Objetivo principal<\/strong>: mantener el estado maximizando la\u00a0bioseguridad externa para evitar introducciones laterales de virus.<\/li>\n<li><strong>ESTABLE POSITIVA<\/strong>: No hay transmisi\u00f3n vertical de cerdas a lechones. Por lo\u00a0tanto, no nacen lechones vir\u00e9micos y hay un flujo negativo de cerdos desde el\u00a0parto hasta el destete.<br \/>\nLa confirmaci\u00f3n laboratorial se puede hacer mediante\u00a0el muestreo de cordones umbilicales o de sangre de lechones nacidos d\u00e9biles\u00a0o lechones al destete.<br \/>\n<strong>Objetivo principal<\/strong>: maximizar la bioseguridad externa\u00a0para evitar introducciones laterales de virus y, en segundo lugar, evaluar las\u00a0posibilidades y riesgos de negativizar.<\/li>\n<li><strong>POSITIVA INESTABLE<\/strong>: Hay transmisi\u00f3n vertical de cerdas a lechones. La\u00a0circulaci\u00f3n del virus es activa en las maternidades; nacen lechones vir\u00e9micos\u00a0y hay un flujo positivo de cerdos desde el parto hasta el destete. Las p\u00e9rdidas\u00a0asociadas a este estatus pueden suponer cinco lechones menos durante la vida\u00a0productiva de cada cerda.<br \/>\n<strong>Objetivo principal<\/strong>: estabilizar el reba\u00f1o y dilucidar el\u00a0origen del virus.<\/li>\n<\/ul>\n<p>[\/vc_column_text][vc_column_text el_class=\u00bbintro\u00bb]<\/p>\n<h2>Detecci\u00f3n del virus PRRS<\/h2>\n<p>Para evitar errores en la clasificaci\u00f3n de la granja y para aplicar las medidas adecuadas, debe\u00a0responderse la siguiente cuesti\u00f3n: en aquellos casos en los que el virus se detecta en la fase\u00a0de transici\u00f3n, \u00bfsu presencia se debe a eventos de <strong>transmisi\u00f3n vertical<\/strong> o a una recirculaci\u00f3n\u00a0en dicha fase?<\/p>\n<p>Obviamente, las medidas a aplicar son completamente diferentes en cada caso.<\/p>\n<p>Si el virus\u00a0est\u00e1 presente en la transici\u00f3n debido a eventos de transmisi\u00f3n vertical, se deben aplicar\u00a0medidas que afecten al hato reproductor, en particular trabajando en la aclimataci\u00f3n de la\u00a0reposici\u00f3n y la vacunaci\u00f3n de las cerdas.<\/p>\n<p>Si la presencia del virus se debe a una transmisi\u00f3n\u00a0horizontal en transici\u00f3n, las medidas de manejo y la bioseguridad interna deben aplicarse en\u00a0esta fase (todo dentro\/fuera, flujos de trabajadores y materiales de trabajo &#8230;)[\/vc_column_text][vc_column_text]La <strong>clasificaci\u00f3n de las granjas<\/strong> debe basarse en una <strong>monitorizaci\u00f3n constante y consistente<\/strong>.<\/p>\n<p>Es importante muestrear suficientes animales de varias camadas. Los partos virales no\u00a0son constantes en el tiempo, por lo que se recomienda obtener muestras consecutivas.<\/p>\n<p>Por ejemplo, muestreo de 30 lechones destetados (por lo menos) dirigido a los cerdos m\u00e1s\u00a0peque\u00f1os y d\u00e9biles cuatro veces durante un per\u00edodo de 90 d\u00edas, o seis cuerdas durante\u00a04 semanas consecutivas.<\/p>\n<p>El tama\u00f1o de la granja y la incidencia de partos tambi\u00e9n deben\u00a0tenerse en cuenta.[\/vc_column_text][vc_column_text]<\/p>\n<h2>Problemas en la monitorizaci\u00f3n por ELISA de cerdas vacunadas<\/h2>\n<p>El cumplimiento de la vacunaci\u00f3n (compliance) o simplemente la monitorizaci\u00f3n\u00a0del hato reproductor pueden hacerse mediante ELISA. En reba\u00f1os multivacunados,\u00a0todas las cerdas deber\u00edan ser positivas por ELISA.<\/p>\n<p>Sin embargo, veterinarios de\u00a0todo el mundo informan a menudo de la existencia de un porcentaje variable de\u00a0<strong>cerdas que son negativas por ELISA, a pesar de haber sido vacunadas varias veces<\/strong>.<\/p>\n<p>Tras la vacunaci\u00f3n, la seroconversi\u00f3n usualmente ocurre a los 7-14 d\u00edas, el pico\u00a0m\u00e1ximo se observa a los 28-42 d\u00edas y a continuaci\u00f3n los valores se mantienen\u00a0en una meseta. Finalmente, los animales pueden perder los anticuerpos (ser\u00a0seronegativos) entre los 4 y 18 meses.<\/p>\n<p>Por lo tanto, una cerda vacunada cada 4\u00a0meses podr\u00eda haber perdido los anticuerpos en ese intervalo y ser negativa por\u00a0ELISA antes de la siguiente revacunaci\u00f3n.<\/p>\n<p>De ser as\u00ed, este animal deber\u00eda volver\u00a0a seroconvertir despu\u00e9s de la revacunaci\u00f3n. Pero, \u00bfc\u00f3mo podemos explicar que\u00a0una cerda permanezca negativa despu\u00e9s de la revacunaci\u00f3n? Obviamente, esta\u00a0situaci\u00f3n crea incertidumbre sobre el estado inmunol\u00f3gico real de las cerdas\u00a0vacunadas y el rendimiento de los ELISAs.<\/p>\n<p>Es importante tener en cuenta que este\u00a0problema se ha observado con muchas vacunas MLV y que, por lo tanto, no es\u00a0espec\u00edfico de una MLV concreta.<\/p>\n<h3>Las posibles causas de resultados negativos de ELISA en cerdas multivacunadas MLV son:<\/h3>\n<ul>\n<li>Almacenamiento y\/o administraci\u00f3n de vacunas inadecuados y\/o\u00a0administraci\u00f3n de mezclas no autorizadas.<\/li>\n<li>Idiosincrasia de la granja. No ocurre en todas las granjas.<\/li>\n<li>Idiosincrasia de los animales. No ocurre en todos los animales de\u00a0una misma granja.<\/li>\n<li>ELISAs. Cuando se han comparado varios ELISAs utilizando la misma\u00a0muestra aparentemente negativa, se ha demostrado que el ELISA es\u00a0la principal causa que est\u00e1 detr\u00e1s de los resultados negativos. Por\u00a0lo tanto, ante un resultado negativo, la primera recomendaci\u00f3n es\u00a0analizar las muestras con m\u00e1s de un ELISA.<\/li>\n<li>Protocolo vacunal. \u00bfPodr\u00eda la administraci\u00f3n continua del mismo\u00a0ant\u00edgeno inducir un estado de anergia? Si ocurre, afectar\u00eda a menos\u00a0del 5% de los animales. Sin embargo, se necesitan m\u00e1s estudios para\u00a0poder aclarar este punto y sus consecuencias.<\/li>\n<\/ul>\n<p>[\/vc_column_text][vc_column_text el_class=\u00bbaviso\u00bb]<\/p>\n<hr \/>\n<p style=\"text-align: center;\">\u00a9 Laboratorios Hipra, S.A. 2026. Reservados todos los derechos.<br \/>\nNinguna parte de este sitio web o cualquiera de sus contenidos puede ser reproducida, copiada, modificada o adaptada, sin el consentimiento previo por escrito de HIPRA.<\/p>\n<p>[\/vc_column_text][\/vc_column][\/vc_row][vc_row top_padding=\u00bb30&#8243; row_id=\u00bbreferencias\u00bb][vc_column width=\u00bb1\/1&#8243;]<div class=\"toggle\"><div class=\"toggle-title \"><i class='fa fal fa-book'><\/i>Referencias<\/div><div class=\"toggle-inner\"><p>\n<ul>\n<li>Bautista EM, Meulenberg JJ, Choi CS, Molitor TW. Structural polypeptides of the American (VR-2332) strain of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Arch Virol. 1996:1357-65.<\/li>\n<li>Benfield DA, Nelson E, Collins JE, Harris L, Hennings JC, Shaw DP, Goyal SM, McCullough S, Morrison RB, Joo HS, Gorcyca D, Chladek D. Characterization of swine infertility and respiratory syndrome (SIRS) virus (isolate ATCC VR-2332). 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