NOTA: Algunos de los datos aportados aquí son también válidos para la sección “Transmisión dentro de la granja”.
1. Transmisión directa:
Las vías de transmisión más frecuentes del virus del PRRS entre granjas son la introducción de animales infectados y el uso de semen contaminado.
El virus del PRRS se disemina principalmente por semen o contacto directo con un animal infectado. En este último caso, las situaciones que suponen un mayor riesgo son la introducción de reposición positiva en el rebaño de reproductoras o la introducción de lechones de diferentes orígenes (positivos y negativos) en los cebos.
Respecto a la reposición, aparte de ser una fuente muy importante de introducción del virus, especialmente cuando el origen externo tiene un estatus PRRS positivo o desconocido, las nulíparas negativas también desempeñan un rol importante en el mantenimiento de la infección en una granja positiva, ya que actúan como una un flujo constante de animales susceptibles.
Respecto a la transmisión a partir de otras especies, los jabalís podrían actuar como fuente de infección. Otras especies, incluyendo perros, gatos, tejones, ratas y ratones, etc. no son susceptibles a la infección.
Para más información sobre el papel del semen y el contacto directo en la transmisión del virus, le remitimos al punto “Transmisión entre animales” más adelante en este mismo capítulo.
2. Transmisión indirecta:
Tal y como se detalló en la sección “Características físicas y químicas”, el virus es bastante lábil en el ambiente. Es importante subrayar que no persiste en el ambiente ni sobrevive en fómites bajo condiciones secas y que, por el contrario, el frío favorece su supervivencia.
De todas formas, la transmisión indirecta del virus del PRRS ha sido demostrada a través de varias vías.
a. Vectores:
- Personal: manos, monos de trabajo, guantes, botas, etc. del personal (propio o externo) pueden actuar como vectores mecánicos.
- Fómites: Un variado número de fómites contaminados pueden actuar como vectores mecánicos. Los ejemplos incluyen cualquier suministro agrícola, equipo externo (de electricistas, fontaneros, carpinteros, etc.), agujas, etc. También vale la pena mencionar la importancia de los vehículos de transporte. Se ha demostrado que los cerdos pueden infectarse a través del contacto con las superficies internas de los transportes contaminados con el virus del PRRS. La mejor solución para eliminar el virus de los vehículos de transporte es lavar, desinfectar (las combinaciones de peroxígenos y glutaraldehído-cloruro de amonio cuaternario durante dos horas son altamente eficaces) y el secado.
- Jabalís, insectos y roedores: Aparte de los cerdos domésticos, solo los jabalís son susceptibles al virus del PRRS. La infección de jabalís se ha observado en varios estudios llevados a cabo en Europa y América del Norte. Sin embargo, el papel de estos en la propagación del virus debe considerarse poco relevante, ya que probablemente estén infectados por la transmisión a partir de los cerdos domésticos y no a la inversa. Por otro lado, la transmisión mecánica a través de moscas y mosquitos se ha demostrado experimentalmente. De igual forma, su función también se considera despreciable, ya que en este caso el virus no puede replicarse. Respecto a los roedores, todos los datos disponibles indican que las ratas y los ratones no son un reservorio del virus.
b. Contacto con residuos contaminados y carne:
El virus puede sobrevivir en las lagunas de efluentes/fosos de purines y permanecer infeccioso entre 3 y 8 días a 20ºC y 4ºC, respectivamente.
Por tanto, el reciclaje del agua de la laguna se considera una práctica de alto riesgo. Además, el virus del PRRS puede sobrevivir en el agua durante más de una semana.
Es muy importante secar completamente todas las superficies (equipos, instalaciones, vehículos de transporte, etc.) después del lavado y desinfección.
En la carne de cerdo, el virus del PRRS puede detectarse durante al menos una semana a 4ºC y durante meses en condiciones de congelación (-20ºC). No debe permitirse la entrada de productos crudos de cerdo en la granja.
c. Transmisión aerógena:
Algunos autores afirman que es posible la propagación por aire del virus del PRRS a largas distancias (más de 3 o incluso 9 km). Sin embargo, la transmisión aerógena no siempre se puede demostrar.
En algunos casos, la transmisión del virus del PRRS por el aire no se ha observado ni siquiera en cerdos que comparten un mismo espacio aéreo (en la misma nave).
En otros casos, se ha demostrado solo para distancias muy cortas (unos pocos metros). En algunos países, se ha estimado que la probabilidad de infectarse por transmisión aerógena a >1 kilómetro del brote inicial es extremadamente baja.
En conclusión, los métodos de transmisión indirecta, como los vectores, parecen ser mucho más importantes que la propagación por el aire.
Sea como sea, la transmisión aerógena, ya sea en distancias cortas o largas, parece ser dependiente de aislado (parece ser más común en PRRSV2). Entre otros factores, depende también de las condiciones meteorológicas.
Factores de riesgo de la transmisión aerógena. El riesgo aumenta dependiendo de:
- La cepa. Relacionado con la virulencia. Más común en PRRSV2.
- Orografía plana.
- Proximidad con granjas infectadas que estén activamente excretando virus vía aerosoles.
- Vientos de baja intensidad y con ráfagas intermitentes desde una granja infectada.
- Las bajas temperaturas (<5 ºC) aumentan el riesgo más que las cálidas.
- Una alta humedad relativa (>75%) aumenta el riesgo más que una baja humedad.
© Laboratorios Hipra, S.A. 2023. Reservados todos los derechos.
Ninguna parte de este sitio web o cualquiera de sus contenidos puede ser reproducida, copiada, modificada o adaptada, sin el consentimiento previo por escrito de HIPRA.
- Albina E. Epidemiology of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS): an overview. Vet Microbiol. 1997, 55:309-16.
- Albina E, Carrat C, Charley B. Interferon-alpha response to swine arterivirus (PoAV), the porcine reproductive and respiratory syndrome virus. J Interferon Cytokine Res. 1998, 18:485-90.
- Allende R, Laegreid WW, Kutish GF, Galeota JA, Wills RW, Osorio FA. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus: description of persistence in individual pigs upon experimental infection. J Virol. 2000, 74:10834-7.
- Andino R, Domingo E. Viral quasispecies. 2015, 479-480C:46-51.
- Arruda AG, Friendship R, Carpenter J, Hand K, Ojkic D, Poljak Z. Investigation of the Occurrence of Porcine Reproductive and Respiratory Virus in Swine Herds Participating in an Area Regional Control and Elimination Project in Ontario, Canada. Transbound Emerg Dis. 2015, Mar 11.
- Benfield DA, Christopher-Hennings J, Nelson EA, Rowland RR. , Nelson JK, Chase CL, Rossow KD, Collins JE. Persistent fetal infection of PRRS virus. In Proceedings of the28th Annual Meeting of the American Association of Swine. 1997: 455-8.
- Benfield D, Nelson J, Rossow K, Nelson C, Steffen M, Rowland R. Diagnosis of persistent or prolonged porcine reproductive and respiratory syndrome virus infections. Vet Res. 2000, 31:71.
- Benfield DA, Nelson C, Steffen M, Rowland RRR. Transmission of PRRSV by artificial insemination using extended semen seeded with different concentrations of PRRSV. Proceeding of the American Association of Swine Practitioners. 2000:405-408.
- Bierk MD, Dee SA, Rossow KD, Otake S, Collins JE, Molitor TW. Transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus from persistently infected sows to contact controls. Can J Vet Res. 2001, 65:261-6.
- Blaha T. The «colorful» epidemiology of PRRS. Vet Res. 2000, 31:77-83.
- Brockmeier SL, Lager KM. Experimental airborne transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus and Bordetella bronchiseptica. Vet Microbiol. 2002, 89:267-75.
- Brito B, Dee SA, Wayne S, Alvarez J, Perez A. Genetic diversity of PRRS virus collected from air samples in four different regions of concentrated swine production during a high incidence season. Viruses. 2014, 6:4424-36.
- Charpin C, Mahé S, Keranflec’h A, Belloc C, Cariolet R, Le Potier MF, Rose N. Infectiousness of pigs infected by the Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome virus (PRRSV) is time-dependent. Vet Res.2012, 43:69.
- Cho JG, Dee SA, Deen J, Guedes A, Trincado C, Fano E, Jiang Y, Faaberg K, Collins JE, Murtaugh MP, Joo HS. Evaluation of the effects of animal age, concurrent bacterial infection, and pathogenicity of porcine reproductive and respiratory syndrome virus on virus concentration in pigs. Am J Vet Res. 2006, 67:489-93.
- Cho JG, Dee SA. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Theriogenology. 2006, 66:655-62.
- Cho JG, Deen J, Dee SA. Influence of isolate pathogenicity on the aerosol transmission of Porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Can J Vet Res. 2007, 71:23-7.
- Christianson WT, Choi CS, Collins JE, Molitor TW, Morrison RB, Joo HS. Pathogenesis of porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection in mid-gestation sows and fetuses. Can J Vet Res. 1993, 57:262-8.
- Christopher-Hennings J, Nelson EA, Hines RJ, Nelson JK, Swenson SL, Zimmerman JJ, Chase CL, Yaeger MJ, Benfield DA. Persistence of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in serum and semen of adult boars. J Vet Diagn Invest. 1995, 7:456-64.
- Christopher-Hennings J, Nelson EA, Nelson JK, Hines RJ, Swenson SL, Hill HT, Zimmerman JJ, Katz JB, Yaeger MJ, Chase CC, et al. Detection of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in boar semen by PCR. J Clin Microbiol. 1995, 33:1730-4.
- Christopher-Hennings J, Nelson EA, Benfield DA. Detecting PRRSV in boar semen. Swine Health and Production. 1996, 4:37-9.
- Christopher-Hennings J, Nelson EA, Nelson JK, Benfield DA. Effects of a modified-live virus vaccine against porcine reproductive and respiratory syndrome in boars. Am J Vet Res. 1997, 58:40-5.
- Christopher-Hennings J. The pathogenesis of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) in the boar. Vet Res. 2000, 31:57-8.
- Christopher-Hennings J. Monitoring for porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) in the boar stud. J Swine Health Prod. 2001, 9:186-8.
- Christopher-Hennings J, Holler LD, Benfield DA, Nelson EA. Detection and duration of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in semen, serum, peripheral blood mononuclear cells, and tissues from Yorkshire, Hampshire, and Landrace boars. J Vet Diagn Invest. 2001, 13:133-42.
- Corzo CA, Mondaca E, Wayne S, Torremorell M, Dee S, Davies P, Morrison RB. Control and elimination of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Virus Res. 2010, 154:185-92.
- Cutler TD, Wang C, Hoff SJ, Kittawornrat A, Zimmerman JJ. Median infectious dose (ID₅₀) of porcine reproductive and respiratory syndrome virus isolate MN-184 via aerosol exposure. Vet Microbiol. 2011, 151:229-37.
- Dee SA, Joo HS. Prevention of the spread of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in endemically infected pig herds by nursery depopulation. Vet Rec. 1994, 135:6-9.
- Dee SA, Deen J, Rossow K, Wiese C, Otake S, Joo HS, Pijoan C. Mechanical transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus throughout a coordinated sequence of events during cold weather. Can J Vet Res. 2002, 66:232-9.
- Dee S, Deen J, Rossow K, Weise C, Eliason R, Otake S, Joo HS, Pijoan C. Mechanical transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus throughout a coordinated sequence of events during warm weather. Can J Vet Res. 2003, 67:12-9.
- Dee SA, Deen J, Otake S, Pijoan C. An experimental model to evaluate the role of transport vehicles as a source of transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus to susceptible pigs. Can J Vet Res. 2004, 68:128-33.
- Dee SA, Martinez BC, Clanton C. Survival and infectivity of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in swine lagoon effluent. Vet Rec. 2005, 156:56-7.
- Dee SA, Cano JP, Spronk G, Reicks D, Ruen P, Pitkin A, Polson D. Evaluation of the long-term effect of air filtration on the occurrence of new PRRSV infections in large breeding herds in swine-dense regions. Viruses. 2012, 4:654-62.
- De Jong MC, Kimman TG. Experimental quantification of vaccine-induced reduction in virus transmission. Vaccine. 1994, 12:761–766.
- DiekmannO, Heesterbeek JA, Metz JA. On the definition and the computation of the basic reproduction ratio R0 in models for infectious diseases in heterogeneous populations. J Math Biol. 1990, 28:365-82.Duan X, Nauwynck HJ, Pensaert MB. Virus quantification and identification of cellular targets in the lungs and lymphoid tissues of pigs at different time intervals after inoculation with porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV). Vet Microbiol. 1997, 56:9-19.
- Goldberg TL, Lowe JF, Milburn SM, Firkins LD. Quasispecies variation of porcine reproductive and respiratory syndrome virus during natural infection. Virology. 2003, 317:197-207.
- Guarino H, Cox RB, Goyal SM, Patnayak DP. Survival of Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus in Pork Products. Food Environ Virol. 2013 Jun 13.
- Hall W, Neumann E. Fresh Pork and Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus: Factors Related to the Risk of Disease Transmission. Transbound Emerg Dis. 2013 Sep 10.
- Hermann JR, Muñoz-Zanzi CA, Roof MB, Burkhart K, Zimmerman JJ. Probability of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus infection as a function of exposure route and dose. Vet Microbiol. 2005, 110:7-16.
- Hermann JR, Hoff S, Muñoz-Zanzi C, Yoon KJ, Roof M, Burkhardt A, Zimmerman J. Effect of temperature and relative humidity on the stability of infectious porcine reproductive and respiratory syndrome virus in aerosols. Vet Res. 2007, 38:81-93.
- Hooper CC, Van Alstine WG, Stevenson GW, Kanitz CL. Mice and rats (laboratory and feral) are not a reservoir for PRRS virus. J Vet Diagn Invest. 1994, 6:13-5.
- Kappes MA, Faaberg KS. PRRSV structure, replication and recombination: Origin of phenotype and genotype diversity. Virology. 2015, 479-480:475-86.
- Karniychuk UU, Saha D, Geldhof M, Vanhee M, Cornillie P, Van den Broeck W, Nauwynck HJ. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) causes apoptosis during its replication in fetal implantation sites. Microb Pathog. 2011, 51:194-202.
- Karniychuk UU, Nauwynck HJ. Pathogenesis and prevention of placental and transplacental porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection. Vet Res. 2013, 44:95.
- Klinkenberg, D, de Bree, J, Laevens, H, de Jong, MC, Within- and
between-pen transmission of Classical Swine Fever Virus: a new method to
estimate the basic reproduction ratio from transmission experiments. Epidemiol. Infect. 2002, 128: 293–299.Kristensen CS, Bøtner A, Takai H, Nielsen JP, Jorsal SE. Experimental airborne transmission of PRRS virus. Vet Microbiol. 2004, 99:197-202. - Labarque GG, Nauwynck HJ, Van Reeth K, Pensaert MB. Effect of cellular changes and onset of humoral immunity on the replication of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in the lungs of pigs. J Gen Virol. 2000, 81:1327-34.
- Larochelle R1, D’Allaire S, Magar R. Molecular epidemiology of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) in Québec. Virus Res. 2003, 96:3-14.
- Le Potier MF, Blanquefort P, Morvan E, Albina E. Results of a control programme for the porcine reproductive and respiratory syndrome in the French ‘Pays de la Loire’ region. Vet Microbiol. 1997, 55:355-60.
- Magar R, Larochelle R, Dea S, Gagnon CA, Nelson EA, Christopher-Hennings J, Benfield DA. Antigenic comparison of Canadian and US isolates of porcine reproductive and respiratory syndrome virus using monoclonal antibodies to the nucleocapsid protein. Can J Vet Res. 1995, 59:232-4.
- Martín-Valls GE, Kvisgaard LK, Tello M, Darwich L, Cortey M, Burgara-Estrella AJ, Hernández J, Larsen LE, Mateu E. Analysis of ORF5 and full-length genome sequences of porcine reproductive and respiratory syndrome virus isolates of genotypes 1 and 2 retrieved worldwide provides evidence that recombination is a common phenomenon and may produce mosaic isolates. J Virol. 2014, 88:3170-81.
- Mondaca-Fernández E, Meyns T, Muñoz-Zanzi C, Trincado C, Morrison RB. Experimental quantification of the transmission of Porcine reproductive and respiratory syndrome Can J Vet Res. 2007, 71:157-60.
- Nodelijk G, de Jong MC, Van Nes A, Vernooy JC, Van Leengoed LA, Pol JM, Verheijden JH. Introduction, persistence and fade-out of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in a Dutch breeding herd: a mathematical analysis. Epidemiol Infect.2000, 124: 173-82.
- Nodelijk G, de Jong MC, van Leengoed LA, Wensvoort G, Pol JM, Steverink PJ, Verheijden JH. A quantitative assessment of the effectiveness of PRRSV vaccination in pigs under experimental conditions. 2001, 19:3636-44.
- Nodelijk G. Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) with special reference to clinical aspects and diagnosis. A review. Vet Q. 2002, 24:95-100.
- Nodelijk G, Nielen M, De Jong MC, Verheijden JH. A review of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in Dutch breeding herds: population dynamics and clinical relevance. Prev Vet Med. 2003, 60:37-52.
- Otake S, Dee SA, Rossow KD, Joo HS, Deen J, Molitor TW, Pijoan C. Transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus by needles. Vet Rec. 2002, 150:114-5.
- Otake S, Dee SA, Rossow KD, Moon RD, Trincado C, Pijoan C. Transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus by houseflies (Musca domestica). Vet Rec. 2003, 152:73-6.
- Otake S, Dee SA, Moon RD, Rossow KD, Trincado C, Farnham M, Pijoan C. Survival of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in houseflies. Can J Vet Res. 2003, 67:198-203.
- Otake S, Dee SA, Moon RD, Rossow KD, Trincado C, Pijoan C. Evaluation of mosquitoes, Aedes vexans, as biological vectors of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Can J Vet Res. 2003, 67:265-70.
- Otake S, Dee S, Corzo C, Oliveira S, Deen J. Long-distance airborne transport of infectious PRRSV and Mycoplasma hyopneumoniae from a swine population infected with multiple viral variants. Vet Microbiol. 2010, 145:198-208.
- PileriE, Gibert E, Soldevila F, García-Saenz A, Pujols J, Diaz I, Darwich L, Casal J, Martín M, Mateu E. Vaccination with a genotype 1 modified live vaccine against porcine reproductive and respiratory syndrome virus significantly reduces viremia, viral shedding and transmission of the virus in a quasi-natural experimental model. Vet Microbiol. 2015, 175:7-16.
- PileriE, Mateu E. Review on the transmission porcine reproductive and respiratory syndrome virus between pigs and farms and impact on vaccination. Vet Res. 2016, 47:108.
- PileriE, Martín-Valls GE, Díaz I, Allepuz A, Simon-Grifé M, García-Saenz A, Casal J, Mateu E. Estimation of the transmission parameters for swine influenza and porcine reproductive and respiratory syndrome viruses in pigs from weaning to slaughter under natural conditions. Prev Vet Med. 2017a, 138:147-155.
- PileriE, Gibert E, Martín-Valls GE, Nofrarias M, López-Soria S, Martín M, Díaz I, Darwich L, Mateu E. Transmission of Porcine reproductive and respiratory syndrome virus 1 to and from vaccinated pigs in a one-to-one model. Vet Microbiol. 2017b, 201:18-25.
- Pirtle EC, Beran GW. Stability of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in the presence of fomites commonly found on farms. J Am Vet Med Assoc. 1996, 208:390-2.
- Pitkin A, Deen J, Dee S. Further assessment of fomites and personnel as vehicles for the mechanical transport and transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Can J Vet Res. 2009, 73:298-302.
- Prieto C, García C, Simarro I, Castro JM. Temporal shedding and persistence of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in boars. Vet Rec. 2004, 154:824-7.
- Prieto C, Castro JM. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection in the boar: a review. Theriogenology. 2005, 63:1-16.
- Romagosa A, Allerson M, Gramer M, Joo HS, Deen J, Detmer S, Torremorell M. Vaccination of influenza a virus decreases transmission rates in pigs. Vet Res. 2011;42:120.
- RoseN, Renson P, Andraud M, Paboeuf F, Le Potier MF, Bourry O. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSv) modified-live vaccine reduces virus transmission in experimental conditions. 2015, 33:2493-9.
- Rossow KD, Bautista EM, Goyal SM, Molitor TW, Murtaugh MP, Morrison RB, Benfield DA, Collins JE. Experimental porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection in one-, four-, and 10-week-old pigs. J Vet Diagn Invest. 1994, 6:3-12.
- Rossow KD, Collins JE, Goyal SM, Nelson EA, Christopher-Hennings J, Benfield DA. Pathogenesis of porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection in gnotobiotic pigs. Vet Pathol. 1995, 32:361-73.
- Rowland RR, Steffen M, Ackerman T, Benfield DA. The evolution of porcine reproductive and respiratory syndrome virus: quasispecies and emergence of a virus subpopulation during infection of pigs with VR-2332. Virology. 1999, 259:262-6.
- Schurrer JA, Dee SA, Moon RD, Murtaugh MP, Finnegan CP, Deen J, Kleiboeker SB, Pijoan CB. Retention of ingested porcine reproductive and respiratory syndrome virus in houseflies. Am J Vet Res. 2005, 66:1517-25.
- Snijder EJ, Kikkert M, Fang Y. Arterivirus molecular biology and pathogenesis. J Gen Virol. 2013, 94:2141-63.
- Swenson SL, Zimmerman J. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus in experimentally infected boars: isolation from semen. In Proceedings of the American Association of Swine Practitioners. 1993, 719-20.
- Swenson SL, Hill HT, Zimmerman JJ, Evans LE, Landgraf JG, Wills RW, Sanderson TP, McGinley MJ, Brevik AK, Ciszewski DK, et al. Excretion of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in semen after experimentally induced infection in boars. J Am Vet Med Assoc. 1994, 204:1943-8.
- Torremorell M, Pijoan C, Janni K, Walker R, Joo HS. Airborne transmission of Actinobacillus pleuropneumoniae and porcine reproductive and respiratory syndrome virus in nursery pigs. Am J Vet Res. 1997, 58:828-32.
- Voicu IL, Silim A, Morin M, Elazhary MASY. Interaction of porcine reproductive and respiratory syndrome virus with swine monocytes. Vet Rec. 1994, 134:422-423.
- Yoon IJ, Joo HS, Christianson WT, et al. Persistent and contact infection in nursery pigs experimentally infected with porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus. Swine Health and Production. 1993, 1:5-8.
- VelthuisAG, de Jong MC, de Bree J, Nodelijk G, van Boven M. Quantification of transmission in one-to-one experiments. Epidemiol Infect. 2002, 128, 193-204.
- Wagstrom EA, Chang CC, Yoon KJ, Zimmerman JJ. Shedding of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in mammary gland secretions of sows. Am J Vet Res. 2001, 62:1876-80.
- Wills RW, Zimmerman JJ, Yoon KJ, Swenson SL, McGinley MJ, Hill HT, Platt KB, Christopher-Hennings J, Nelson EA. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus: a persistent infection. Vet Microbiol. 1997, 55:231-40.
- Wills RW, Zimmerman JJ, Yoon KJ, Swenson SL, Hoffman LJ, McGinley MJ, Hill HT, Platt KB. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus: routes of excretion. Vet Microbiol. 1997, 57:69-81.
- Wills RW, Doster AR, Galeota JA, Sur JH, Osorio FA. Duration of infection and proportion of pigs persistently infected with porcine reproductive and respiratory syndrome virus. J Clin Microbiol. 2003, 41:58-62.
- Wyckoff AC, Henke SE, Campbell TA, Hewitt DG, VerCauteren KC. Feral swine contact with domestic swine: a serologic survey and assessment of potential for disease transmission. J Wildl Dis. 2009, 45:422-9.
- Zimmerman JJ, Yoon KJ, Wills RW, Swenson SL. General overview of PRRSV: a perspective from the United States. Vet Microbiol. 1997, 55:187-96.